CLIA认证实验室中雄激素受体剪接变体7(AR-V7)的分析验证 | CTC专题
患有去势抵抗性前列腺癌(CRPC)的患者通常会使用靶向雄激素受体(AR)配体结合区域的药物进行治疗。但是AR剪接变体7 (AR-V7)缺乏配体结合域,如果在循环肿瘤细胞中检测到AR-V7,可能与这些药物的耐药性有关。我们在CLIA认证实验室开发了一个AR-V7的检测试验。分离循环肿瘤细胞,将mRNA逆转录成cDNA。实时定量PCR检测内参转录本(ACTB beta-actin和GAPDH)、前列腺特异性转录本(前列腺特异性膜抗原PSA、前列腺特异性抗原PSMA和AR -全长AR-FL)和AR-V7。验证样本包括AR-V7表达的前列腺癌(LNCaP95)、38个外周血对照和21个来自CRPC患者的血液样本。该方法在外周血中可以检测到5个LNCaP95细胞,具有很高的分析灵敏度。相同批次以及不同批次实验LNCaP95细胞,相似的Ct值再现,显示出较高的分析精度(AR-V7 Ct ,CV为0.67%)。38例健康对照样本均为AR-V7阴性,诊断特异性高(100%)。在研究实验室和临床诊断实验室同时检测21份CRPC样本,证实了诊断准确性:AR-V7有4例阳性,17例阴性(准确率100%)。这是首次验证的临床检测AR-V7具有很高的分析灵敏度、精度、特异性和准确性的方法。
来自于詹姆斯•布坎南布雷迪泌尿研究所和泌尿系,约翰霍普金斯大学医学院的研究团队利用CTC富集,qPCR,sanger测序等技术验证了临床检测AR-V7分析的灵敏度、精度、特异性和准确性。
雄激素途径的改变是前列腺癌进展的关键。抑制雄激素受体(AR)信号转导是许多前列腺癌药物的治疗目标。手术和放疗后残留或复发的患者采用化学去势(促性腺激素释放激素激活剂或抑制剂)治疗。在出现初步反应后,大多数患者会发展为进展性疾病,称为去势抵抗性前列腺癌(CRPC)。有趣的是,CRPC并不是雄激素独立的,一些旨在进一步抑制AR通路的药物显示出了提高生存率,包括阿比特龙和恩杂鲁胺。阿比特龙是一种CYP17A1抑制剂,可破坏肾上腺和前列腺内二氢睾酮(AR配体)前体的合成。而恩杂鲁胺通过拮抗结合到AR配体结合区域来抑制信号传导。然而,并非所有患者对这些新型AR靶向药物的反应都是一样的。大约20% - 40%的CRPC患者对这些药物的临床反应较差,几乎所有最初有反应的患者都获得了继发性耐药。人们提出了几种耐药机制。耐药的一种机制是对AR转录本的可变剪切,导致产生截短了的AR剪接变体7 (AR-V7)蛋白。
AR蛋白有四个结构域:N端结构域、DNA结合结构域、铰链区和雄激素结合的N端配体结合结构域。配体(双氢睾酮)与AR配体结合结构域的结合导致AR的核定位。在核中,AR的 N端结构域作为增殖信号和雄激素调控基因(如PSA)的转录激活因子。AR的剪接变体是在2008年发现的,它是通过将内含子的隐外显子剪接到编码dna结合结构域的上游外显子而产生。在22种已知的变体中,AR-V7是研究最广泛的变体,携带最多的预后信息。此外,AR-V7是唯一一种可以在临床样本中检测到的蛋白变体。AR-V7只包含完整长度(FL)中8个外显子中的前3个,然后是隐藏的外显子3,编码一个新的16个氨基酸的变异特异性肽。AR-V7缺乏蛋白的配体结合域,但保留转录活性。因此,AR-V7作为一种组成活性AR蛋白,独立于其与双氢睾酮的结合。靶向AR的药物会破坏依赖于双氢睾酮的AR信号。因此,这些药物可以抑制AR- FL蛋白的信号转导,但不能抑制AR- V7的信号转导。在CRPC患者中,多项临床前研究将疾病进展和死亡率与AR剪接变异的存在和丰度联系起来。在CRPC患者的循环肿瘤细胞(CTCs)中检测AR-V7的临床研究已经被4个独立的组证实与AR靶向药物的耐药性相关(见讨论部分)。然而,AR-V7的表达似乎不会对紫杉烷化疗反应产生不利影响。18e21 紫杉烷影响微管网络,导致AR的细胞质隔离,从而干扰AR的核信号。因此,如果有临床有效的检测方法,CRPC患者CTC中的AR-V7检测可以纳入治疗决策。尽管迄今为止有许多发表的研究支持AR-V7的临床意义,但该测试的分析性能尚未被报道。AR-V7测试现在有几个正在进行的临床试验:7个注册临床试验(1个III期试验,5个II期试验,和1个试点试验,https:// ClinicalTrials.gov,2016年1月3日),使用术语“AR-V7”或“ARV7”(由莫恩和安托那拉基斯总结)。鉴于集合数据支持AR-V7作为一种诊断指标,以及需要通过临床试验进一步进行临床验证,AR-V7试验的分析验证至关重要。在本报告中,我们描述了首个实验室开发的AR-V7检测的分析验证和性能特征,该检测在CLIA认证的实验室(注册时间:2015年8月13日)进行。
方法
细胞系和标本
前列腺癌细胞系LNCaP和LNCaP95,由罗博士的实验室提供,按照说明进行培养。验证包括对LNCaP细胞的AR-FL转录本和LNCaP95细胞的AR-V7转录本进行dDNA微卫星指纹技术、RT-PCR和Sanger测序等技术的检测验证。确认LNCaP95表达AR-V7后,以其RNA作为阳性对照,和人脾mRNA(分类号:636525;Clontech, Mountain View, CA)作为阴性对照。作为前列腺癌细胞分离的阳性对照,对LNCaP95细胞进行扩增、传代、计数,并在液氮中一次性保存(10000个细胞)。根据经验,与实验中的分析物峰值相比,需要更大数量的细胞。将细胞稀释到5 mL RPMI培养基中,与全血标本平行处理。采用38例健康骨髓供者的废弃外周血标本鉴定AR和AR-V7的表达(14例男性,年龄20 ~ 40岁;24例女性,年龄20 - 69岁)。来自转移性CRPC男性的血液样本(最少10毫升)用两个或更多酸性柠檬酸葡萄糖(黄盖)vacutainer 真空采血管 (BD, Franklin Lakes, NJ)收集并送往临床实验室。1管用于实验,2管用于重复。在样本采集24小时内富集CTCs,收集RNA(一般在4小时内完成)。CTC富集使用AdnaTest前列腺癌选择试剂盒(Qiagen, Hilden, Germany),按照生产商的protocol对CTC进行富集。简单地说,该方法使用免疫磁珠通过上皮细胞和肿瘤相关抗原富集肿瘤细胞。带有专有抗体的磁珠被用于与外周血中的肿瘤细胞结合,并使用磁铁捕获(LSKMAGS15;MilliPore, Darnsted, Germany)。使用含有oligo-(dT)的AdnaTest前列腺癌检测试剂盒(Qiagen)从细胞裂解液中分离出mRNA。所有分离出的mRNA经SensiScript RT kit(货号:205213;Qiagen)在20ml反应中使用以下温度循环设置:37℃ 60min,93℃ 5min,4℃保存。阴性和阳性对照cDNA在同批次产生,并在20℃下一次性保存。互补DNA作为模板在多重PCR反应使用HotStar TaqMaster Mix(Qiagen)和混合引物(试剂盒提供)扩增三个肿瘤相关抗原mRNA(表皮生长因子受体,前列腺特异性抗原(PSA)和前列腺特异性膜抗原(PSMA)和一个对照mRNAβ-肌动蛋白(ACTB)。使用以下PCR条件:95℃为15min,94℃ 30s,61℃ 30s,72℃ 30s,42个Cycle,72℃10min;4℃保存。扩增的PCR产物用Agilent TapeStation 2200 (Agilent, Santa Clara, CA)检测以确认cDNA合成。qpcr
使用表1中的引物对PSMA、PSA、AR-FL和AR-V7的qPCR扩增产物进行测序。该文的研究路线图如下所示:
结果与讨论
我们的结果是开发了一个试验来检测转移性CRPC患者的CTC中AR-V7 mRNA。简单地说,我们先分离CTC,它们的存在与否可利用cDNA在多重PCR 扩增的三个肿瘤相关抗原(EGFR、PSA和PSMA),再使用安捷伦TapeStation 2200进行检测。利用Oligo-d(T)分离富集细胞的mRNA,并反转录成cDNA。分别对6个目标mRNA进行重复的qPCR反应,包括两个内参基因转录本(ACTB和GAPDH)、三个前列腺特异性基因转录本(PSMA、PSA和AR-FL)和AR-V7 mRNA。对每种分析物进行定性解释,并将检测结果报告如下:
i)未检测到mRNA:当所有RT-PCR反应均失败ii)未检测到CTC:内参基因阳性,前列腺特异性标志物阴性iii)检测到CTCs /未检测到AR-V7:内参和前列腺特异性标志物均阳性iv)检测到CTCs /检测到的AR-V7。前列腺特异性标志物和AR-V7反应均为阳性。(PSA或PSMA扩增是CTC检测的证据。阳性对照(LNCaP95 mRNA)、阴性对照(人脾mRNA)和无模板对照(water))富集结果情况:
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